《生理学》课程教学大纲

2018年04月10日 09:09  点击:[]

一、课程基本属性

课程编码:

1152830

课程中文名称:

生理学

课程英文名称:

Physiology

课程类别:

专业教育

课程性质:

拓展课程

总学时/学分:

48学时/3学分

讲课学时/学分:

32学时/2学分

实验学时/学分:

16学时/1学分

课内实践学时/学分:

学时/学分

开课单位:

生命科学学院

开设学期:

3

适用专业及类型:

制药工程/复合应用型

先修课程:

生物化学、细胞生物学

主撰人:

张东、孟凡华

主审人:

杨帆

制定时间:

201768

二、课程简介与教学目标

(一)课程简介

生理学是在动物学、组织胚胎学、生物化学、细胞生物学等学科发展的基础上不断完善的学科,其理论和实验技术近几年也有较快的发展。本课程主要围绕人体生理学进行教学,但鉴于人体试验受到很大限制,故仍有较多资料来源于动物。主要围绕机体及其各组成部分呈现出的各种正常生理功能活动规律、及其产生的机制,机体内外环境变化对上述功能的影响,以及机体在适应环境变化的过程中所发生的包括行为、各器官系统、细胞及其组成物质分子在内的活动变化与机制的基本规律、基本理论进行讲解。本课程在制药工程专业为基础教育拓展课程。

(二)课程教学目标

通过本课程的教学应实现以下目标:

——了解动物机体生命活动的基本规律;生理学和其它相关学科间的相互关系及该学科发展的前沿热点问题。

——熟悉人体各器官、系统的功能、相互联系、调节方式以及与内外环境之间制约关系。

——掌握机体及其各组成部分呈现出的各种正常生理功能活动规律、及其产生的机制,机体内外环境变化对上述功能的影响,以及机体在适应环境变化的过程中所发生的包括行为、各器官系统、细胞及其组成物质分子在内的活动变化与机制的基本规律、基本理论;掌握生理学研究的基本实验技术。

——教学过程中加强对学生科研态度、创新思维的训练,培养观察、辩证分析和解决与生命现象有关问题的能力,为后续课程如《药理学》的学习和今后从事生理学及其相关学科的研究、发展打下理论基础。

、实验实习实训等教学环

(一)实验条件

实验开设过程中需要的主要设备是多道生理信号采集系统、人体轴带式血压计、听诊器、蛙和兔类常用手术器械。

表1 实验主要设备和台件数

序号

实验项目

设备名称

每组应配台件数

备注

1

红细胞计数

显微镜

1

2

蛙心室肌期前收缩与代偿间歇

多道生理信号采集系统

1

3

蛙心离体灌流

同上

1

4

阈刺激、阈上刺激和最大刺激

同上

1

5

骨骼肌的单收缩、复合收缩和强直收缩

同上

1

(二)实验项目

表2 实验项目、内容及要求

序号

实验项目

实验内容

基本要求

1

人体ABO血型鉴定

1)标准血清的吸取和放置

2)采血及与抗血清的混合

3)观察

4)血型判定

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握血型判定方法

2

红细胞脆性实验

1)不同浓度低渗溶液配置

2)血液添加与溶液混合

3)静置

4)观察

5)抗力判定

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握红细胞抵抗低渗溶液抗力判定方法

3

蛙心室肌期前收缩与代偿间歇

1)在体蛙心标本制备

2)多道生理信号采集系统连接、参数设置

3)描记正常心搏曲线

4)用中等强度的单个阈上刺激分别在心室收缩期或舒张早期刺激心室,在心室舒张早期之后的不同时段刺激心室,观察能否引起期前收缩。

6)以上刺激若能引起期前收缩,观察其后有无代偿间歇出现。

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握多道生理信号采集系统的使用方法,观察期前收缩和代偿间歇出现的时间和刺激强度,说明原理,绘制曲线图。

4

离体蛙心灌流

 

1)离体蛙心的制备

2)离体蛙心与多道生理信号采集系统的连接、参数设置

3)记录正常心搏曲线。

4)向套管内加2—65%NaCl溶液观察心搏曲线的频率及振幅的变化。

5)向套管内加入12%CaCl2溶液,观察并记录心搏曲线的变化。

6)向套管中加121%KCl溶液,记录心搏曲线的变化。

7)记录套管中加入1—21100000肾上腺素溶液后心搏曲线的变化。

8)记录套管中加入1—211000000乙酰胆碱溶液后心搏的变化

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握多道生理信号采集系统的使用方法,观察记录正常心搏曲线,观察灌流管里加入不同溶液后心搏曲线的变化规律并解释原理,绘制曲线图。

5

蛙坐骨神经--腓肠肌标本制备

1)捣毁蛙脑和脊髓

2)制备含坐骨神经的体段

3)制备坐骨神经腓肠肌标本

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握蛙双毁髓和坐骨神经腓肠肌标本的制备方法

6

阈刺激、阈上刺激和最大刺激

1)上述制备标本与仪器连接、参数设置

2)观察与记录:阈刺激、阈上刺激和最大刺激强度

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握利用多道生理信号采集系统测定蛙坐骨神经腓肠肌标本阈刺激、阈上刺激和最大刺激的方法并绘制收缩曲线

7

骨骼肌的单收缩、复合收缩和强直收缩

1)仪器参数设置

2)观察与记录:单收缩、复合收缩和强直收缩

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握利用多道生理信号采集系统测定蛙坐骨神经腓肠肌标本单收缩、复合收缩和强直收缩的方法并绘制收缩曲线

8

反射时的测定和反射弧分析

1)脊髓蛙的制备

20.1%0.5%硫酸的刺激反射时测定

3)反射弧分析:坐骨神经麻醉、皮肤感受器破坏和脊髓捣毁

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握利用化学方法测定蛙反射时;掌握反射弧分析的方法,并深刻理解反射弧完整的重要性。

9

胰岛素、肾上腺素对血糖的影响

1)实验动物的准备

2)注射胰岛素和低血糖现象的观察

3)抢救:注射葡萄糖和肾上腺素

1)了解实验目的

2)熟悉实验原理和操作步骤

3)掌握激素对动物血糖的调节及体液调节所需时间长的特点

    (三)实验报告

       1、纸张要求:采用内蒙古农业大学统一印刷实验报告本/纸。

2、内容要求:实验名称、实验目的、实验原理、主要设备与用品、实验内容与步骤、实验结果与分析(实验现象描述、照片或绘图记录、统计数据与分析结果等)、问题与讨论。

3、实验报告每人一份,分组实验可共用小组数据。

(四)实验考核与成绩评定

1.考核方式:出勤+操作考察+实验报告。

2.成绩评定:实验总评成绩=出勤×10%+操作考查×40%+实验报告×50

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